Вестник Кольского научного центра РАН № 2, 2023 г.

Материал и методика исследований Пробные площадки: материалы и схемы экспериментов Вполевых экспериментах использовались следующие виды серпентинсодержащих от­ ходов: серпентинитомагнезит (СМ) - вскрыш­ ная порода Халиловского месторождения магнезита (Оренбургская обл.), сунгулит (ли- зардит) из вмещающих пород Хабозерского месторождения оливинита (СГ) и вермику- лит-лизардитовые отходы (ВСО) добычи фло­ гопита (Мурманская обл.). Пробные площад­ ки с СМ, а также карбонатитовыми отходами (Мурманская обл., г. Ковдор) были заложены в 2010 и 2011 гг. на участках с подзолом аб- радированным и торфяной почвой в 1.5 км (участок 1) и 0.7 км (участок 2) от медно-ни­ келевого предприятия возле г. Мончегорск. Также в 2011 г. на участке 2 был начат экспе­ римент с термоактивированным СМ (СМт/а) и СГ (СГт/а), внесенными в торфяную почву в объемной доле 20%. Пробные площадки с ВСО были заложены в 2013 г. на участке 2, а также в 2014 г. - на участке 3, находившим­ ся в 1 км от медно-никелевого предприятия в г. Заполярный (Slukovskaya et al., 2018). Методы Измерение фотосинтетической активно­ сти растений проводили в июле и сентябре 2020 годас помощью портативного флуори- метра FluorPen-100 после темновой адапта- циив течение 20 минут с помощью специаль­ ных клипс, блокирующих попадание света на листовую пластину. Для каждого вариан­ та эксперимента было выполнено не менее 10 измерений фотосинтетической активно­ сти в средних частях листьев. Содержание аммонийного и нитратно­ го азота анализировали в течение 1-2 суток после отбора проб в июне и сентябре 2020 г. Пробу почвы (фр. -2 мм) в количестве 20 г помещали в пластиковые колбы. Для опре­ деления аммонийного азота экстрагирова­ ние производили дистиллированной водой (50 мл) в течение 5 минут. Полученную су­ спензию центрифугировали. Для определе­ ния нитратного азота экстрагирование вы­ полняли раствором алюмокалиевых квасцов с концентрацией 1% при том же соотноше­ нии т/ж. Суспензии встряхивали в течение 30 минут на перемешивающем устройстве ПЭ-6410 М и центрифугировали. Центрифугирование суспензий для отде­ ления жидкой фазы от твердой осуществля­ ли на центрифуге ОПН-8 в течение 15 минут при скорости вращения 7000 об/мин. Далее надосадочный раствор пропускали через мембранный фильтр МФАС-ОС-2 (размер пор 0,45 мкм, диаметр 47 мм, производство НПО «Владипор») при помощи вакуумного насоса (НВМ-5). Полученный раствор анализирова­ ли на анализаторе жидкости ЭКСПЕРТ-001. Анализ подвижных форм фосфора и ка­ лия проводили по методике Кирсанова в мо­ дификации ЦИНАО (для кислых почв, ГОСТ Р54650-2011) и Мачигина в модификации ЦИ­ НАО (для щелочных почв, ГОСТ 26205-91). Физиологический профиль микробного со­ общества определяли методом MicroRespTM [Campbell et al., 2003; Marinari et al., 2013; Moscatelli et al., 2018]. Функциональное разно­ образие микроорганизмов оценивали с по­ мощью индекса Шеннона. Электронные изображения получали в Ин­ ституте географии РАН с помощью растро­ вого электронного микроскопа JEOL 6610 LV сопряженного с системой энергодисперси­ онного и волнового рентген-спектрометри- ческого анализа Oxford Instruments INCA Xact и INCA Wave. Для специфической подготовки образца перед микроскопированием приме­ нялась система холодно-плазменной метал­ лизации JE0LJFC1600. Результаты и обсуждение Состояние растительного покрова Растительный покров сформирован с ис­ пользованием злаковых растений и слоя вспученного вермикулита, нанесенного на щелочные материалы барьеров для улуч­ шения прорастания семян. Исследованы эко­ системы на двух экспериментальных участ­ ках - на подзолеабрадированном и торфяной почве [Slukovskaya et al., 2021]. 9