Вестник МГТУ. 2017, №2.

Вестник МГТУ. 2017. Т. 20, № 2. С. 445–454. DOI: 10.21443/1560-9278-2017-20-2-445-454 451 Особенности паразитирования личинок анизакидных нематод в печени рыб изучены некоторыми авторами [9–11]. Грабба описал, что при инвазии трески личинки Сontracaecum sp . и Anisakis sp. инкапсулируются внутри паренхимы печени [9]. Позже Еларифи при исследовании заражения мерланга анизакидными нематодами получил идентичную картину инкапсуляции паразитов в печени хозяина [10]. По результатам представленной работы установлено, что вокруг личинки C . rudolphii в печени атерин также формируется капсула сходного строения. Капсула не только защищает паразита от специфических антител хозяина, но и способна обеспечивать полноценное питание за счет ресурсов хозяина [12]. Установлено, что капсулы личинок гельминтов подавляют реакцию лейкоцитов хозяина, а также индуцируют формирование хозяином капсулы специфического строения, которая отличается по морфологической структуре от обычной фиброзной капсулы, вокруг инородного тела. Капсула, сформированная хозяином под влиянием экзометаболитов тканевого паразита, функционирует как биологический барьер аналогично гистогематическому барьеру с избирательной проницаемостью. Основными функционирующими клеточными элементами капсулы являются фибробласты и эндотелий микроциркуляторного русла [13]. Личинки гельминтов замедляют дифференцировку фибробластов, которые длительное время остаются функционально активными и синтезируют гиалуроновую кислоту, повышающую проницаемость капсулы для питательных веществ. Такая капсула физиологически чрезвычайно активна, через нее происходит интенсивный транспорт питательных веществ к паразиту против градиента концентрации с участием ферментов и затратой энергии при активации АТФ-азной системы [14]. Она непроницаема для специфических антител. Возможно, что это необходимая особенность тканевого паразита, который может существовать в организме промежуточного хозяина в течение нескольких лет. Подобные изменения, обеспечивающие им длительное существование, служат эволюционной адаптацией к тканевому паразитизму. Результаты проведенного патологоанатомического вскрытия и микроскопического исследования показали, что в печени атерины, зараженной нематодами C . rudolphi l., наблюдаются гистологические изменения – паренхиматозное воспаление печени, жировая дистрофия, атрофия паренхимы, некроз гепатоцитов и, как следствие, холестаз. Аналогичные изменения в печени рыб при инвазии нематодами отмечены в работах многих авторов. При высокой инвазии личинками нематод семействами Anisakidae в печени трески наблюдались патологические изменения гепатоцитов, указывающие на их перерождение в липоциты [15]. Кроме того, в печени зараженных рыб отмечались снижение секреторной активности гепатоцитов и нарушение окислительно-восстановительных процессов в клетках. Инвазия C . оsculatum в печени трески и ледяной рыбы вызывает некроз и слабо выраженный фиброз тканей [16]. Инкапсуляция личинки нематоды Raphidascaris acus в печени желтого окуня приводит к изменению функций гепатоцитов [17]. При этом авторы установили деформацию кровеносных сосудов в печени, которая происходит в результате миграции червей. Заключение В результате комплексного исследования печени у атерины при инвазии C . rudolphi l. с использованием морфологического, гистохимического, морфометрического и электронно-микроскопического методов установлены гистологические изменения, характерные для очагового гепатита. Под воздействием личинок нематод нарушается кровообращение в печени, происходит жировая и углеводная дистрофия гепатоцитов, желчных протоков и дистрофия их эпителия. Отмечено также разрастание соединительной ткани вокруг паразитарных очагов, что является защитной реакцией организма хозяина. Библиографический список 1. Пронина С. В., Пронин Н. М. Взаимоотношения в системах гельминты – рыбы (на тканевом, органном и организменном уровнях) / отв. ред. С. С. Шульман; АН СССР. Сиб. отд-ние. Бурят. науч. центр. Ин-т биологии. М. : Наука, 1988. 176 с. 2. Куклина М. М., Куклин В. В. Особенности белкового обмена серебристых чаек ( Larus argentatus Pontop.) при инвазии трематодами Himasthla larina (Trematoda: Echinostomatidae) // Известия РАН. Сер. Биологическая. 2007. № 5. С. 563–569. 3. Извекова Г. И. Влияния плероцеркоидов Ligula intestinalis (L.) (Cestoda, Pseudophyllidae) на промежуточных хозяев – рыб // Успехи современной биологии. 2010. Т. 130, № 6. C. 610–621. 4. Moravec F. Parasitic nematodes of freshwater fishes of Europe. Dordrecht : Kluwer Academic Publishers, 1994. 473 p. 5. Пронькина Н. В., Попюк М. П., Полякова Т. А., Моргун О. А. Встречаемость личинок Contracaecum rudolphii Hartwich, 1964 (Nematoda: Anisakidae) у рыб северной части Черного и Азовского морей // XV конф. украинского науч. общ-ва паразитологов : тезисы докладов. Киев, 2013. С. 87. 6. Быховская-Павловская И. Е. Паразиты рыб. Руководство по изучению. Л. : Наука, 1985. 122 с. 7. Роскин Г. И., Левинсон Л. Б. Микроскопическая техника. М. : Советская наука, 1957. 469 с.